1）游离脂（solvent extractable lipids）的提取
取12 g 土壤样品和 1-5 g 植物样品，首先加入重蒸水超声处理 15 分钟溶解土壤和植物样品中的水溶性极性化合物，然后离心，收集上层清夜，再重复1 次处理过程。将离心后的土壤与植物剩余物进行冷冻干燥去除残余水分。干燥后的土壤与植物剩余物分别用 30 ml 二氯甲烷溶液、二氯甲烷/甲醇混合溶液（1：1，v/v）和甲醇溶液超声提取 15 分钟 3 次，离心，合并所有提取的溶液用玻璃纤维滤膜（Whatman GF/A）过滤。过滤后的溶液通过旋转蒸发进行浓缩后，移入 2 ml 玻璃瓶中并在氮气下吹干（25 ℃）。吹干后的剩余物质即为提取的游离脂，称重（差量法）后，用气相色谱-质谱联用仪（GC/MS）进行定性和定量测定。提取游离脂后的剩余土壤和植物样品风干后储存在-20 ℃冰箱中供碱水解，提取酯结合的脂类物质。
2）酯结合的脂类物质的提取（碱水解法）
称取一定量的第一步剩余的土壤或和植物样品，将提取游离脂后的剩余土壤和植物样品放入 1 M 甲醇化氢氧化钾溶液中，循环加热回流 3 小时（温度 70 ℃），待冷却后，离心（30min/2500 r）取上清液，然后储存在 4 ℃冰箱中。剩余土壤和植物样品中再加入二氯甲烷/甲醇混合溶液（1∶1，v/v），超声波提取两次并离心，两次的液体过滤后与上一步滤液合并。使用 6 mol/l 的稀盐酸将所得滤液的 pH 调至 1.0，使用旋转蒸发仪去除有机溶剂后，加入50 ml的去离子水，然后再加入二氯甲烷进行萃取，这样就分离出酯结合的脂类物质。分离后的二氯甲烷中再加入无水硫酸钠去除水分，旋转蒸发进行超浓缩后，转移到 2 ml 玻璃瓶中，在N2 下吹干，称重，吹干后的剩余物质即为提取的结合脂。
3）气相色谱-质谱联用仪（GC/MS）分析 检测仪器：TRACE 1600-ISQ7610气质联用仪 （GC-MS）
所有的提取物用 1 ml 二氯甲烷/甲醇溶液（1∶1，v/v）溶解，在 25 ℃下氮气吹干，通过与 90 ul 三氟乙酰胺（N，O-bis-（trimethylsilyl）trifluoroacetamide，BSTFA）和 10 ul 氮苯（pyridine）在 70 ℃下反应 3 h，转换为三甲基硅烷基（trimethylsilyl，TMS）衍生物。待冷却后，加入 900 ul 正己烷稀释，然后用 GC/MS（TRACE 1600-ISQ7610气质联用仪）分析化合物的组成和丰度。采用 DB-5MS UI（Agilent,J&W Scientific，30 mｘ0.25 mmｘ0.25 μm）柱子，进样口温度 250 ℃，分流比 10:1，载气为高纯氦气，流速为1 ml/min，升温程序为 65 ℃ 保持 2 min，以 6 ℃/min 涨至 300 ℃保持 20 min。离子源温度 250 ℃，接口温度 280 ℃，溶剂切除时间 3 min，扫描 50-650 m/z。通过比较 TIC 峰面积与外部标准的峰面积来实现单个化合物的定量（或内标法）。所有样品中化合物单体的含量以 mg/g 有机碳表示。
4）植物性碳的降解特征
角质素与软木脂类脂质化合物的降解特征分析采用以下公式：
①C18 ω－羟基烃酸与所有C18羟基酸化合物含量之比：ω-C18/∑C18
（∑C18=C18 ω－羟基烃酸+C18 α、ω-烷二酸+C18 中长链取代酸）比值不断升高，代表植物脂类化合物在土壤中逐步被分解；
②软木脂和角质素之和：∑SC=∑S+∑C+∑SvC
（∑S= Suberin软木脂，∑C= Cutin角质素，∑SvC= Both in cutin and suberin）。
③RLS——长链（＞C20烷酸）与短链（＜C20）烷酸比值
④总软木脂∑S=C20~C32 ω-羟基烷酸+C20~C32 α，ω二酸+9，10-C18 环氧二酸；
⑤总角质∑C=C14、C15、C17中链取代羟基酸+C16中链取代单、二羟基酸和二酸
⑥总木脂质或角质∑SṿC=C16，C18 ω-羟基烷酸+ω C18二羟基和三羟基酸+9，10-C18 环氧羟基酸+C16，C18 α，ω二酸
⑦S/C--（∑S+∑SṿC）/（∑C+∑SṿC）
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