概述

所有绿色植物都含有色素，以进行光合作用。因而测定水样中色素的含量，也是一个对浮游植物的定量方法。

各门藻类虽具有不同的色素组成，但都含有叶绿素a。叶绿素a不仅含量高，而且最重要，是整个光合作用过程中的能量传递中心。因此，主要以叶绿素a值作为浮游植物现存量的指标。

由于叶绿素测定法比计数法简便和快速，目前已成为一个常用的测定浮游植物现存量的方法。同时，叶绿素值通过一定的换算，也可指示初级生产量的大小。

一、水样的采集

用于测定叶绿素的水样的采集方法与用于浮游植物数量测定的相同。采集的水样可根据水中浮游植物含量的多少确定，一般采用0.5-2升，如浮游植物含量特别低，需增加水样量。

二、水样的保存

水样注入水样瓶后，应避免阳光直射，放在荫凉处。如水样的进一步处理需经较长时间（例如在次日），则应该置低温（-4℃）保存，并加入1%碳酸镁悬浊液，每升水样中加1毫升，以防止酸化。

三、抽滤

安装好抽滤设备——包括砂芯过滤装置（直径50毫米的）、抽滤瓶、负压表、真空泵等。在滤器中放入滤膜。滤膜用玻璃纤维滤膜或混合纤维酯微孔滤膜（孔径0.8微米）。前者过滤速度快，需过滤水样量大时，应优先采用。如水样中未放碳酸镁液，应在滤膜上先抽滤约0.5-1毫升的碳酸镁液以防止酸化。抽滤时负压应不大于0.5大气压（50千帕）。

抽滤完毕后，用镊子小心地取下滤膜，将其对折（有浮游植物样品的一面向里），再用普通滤纸吸压，尽量去除滤膜水分。如不立即提取，应将滤膜放在黑暗低温条件下保存。在普通冰箱冷冻室可保存几天；在-20℃低温冰箱中可保存30天。

四、提取

样品先经研磨，可提高色素提取效果。研磨可用玻璃研钵或玻璃匀浆器。将滤膜剪碎，放入研钵或匀浆器，加入7-8毫升提 取剂，研磨几分钟。将研磨后的匀浆物移入具塞带刻度的离心管中。用少量提取剂冲洗研钵或匀浆器，冲洗液并入离心管中，使最终容积略小于10毫升。盖上管塞，摇动后置黑暗低温处。

提取液可用90%丙酮、90%或100%甲醇、90%乙醇等。一般最常用的是丙酮。近年来国际上有关专家通过研究试验，从提取效率、安全、保健等考虑，建议今后不使用丙酮，而改用乙醇作提取剂。我国多年来大多使用丙酮，考虑到资料的可比性，目前仍可继续使用。

提取时间应不少于6小时(乙醇或甲醇)或20小时(丙酮)，不多于24小时。

五、离心

将装有提取液的离心管放入离心机中，在转速3500-4000转/分下离心10-15分钟。将上层叶绿素提取清液移入定量试管中，再用少量丙醇悬浮沉淀物并离心取得提取清液。重复1-2次。最后将提取液定容到10毫升。

六、光密度测定

在一定光径(1-3厘米)的比色m中读取波长为665和750纳米处的光密度。750纳米处的光密度是作为校正其他物质的吸收值用，参比液(提取剂空白)和样品液间的750纳米光密度值之差应不大于0. 005。665纳米处光密度值应在0.1-0.8之间。

加1滴HCI液到比色皿中，在1-15分钟内再次测定750和665纳米处的光密度。

分光光度计的波长精度和光谱带宽对测定结果有较大影响，应注意采用适合的光度计。

七、计算结果

按下列公式计算：

式中C——水样中叶绿素a的含量（毫克/米³或微克/升）；

P_a——水样中脱镁叶绿素的含量（毫克/米³或微克/升）；

E_b——提取液酸化前波长665纳米和750纳米处的光密度之差；

E_a——提取液酸化后波长665纳米和750纳米处的光密度之差；

R——最大酸比，即不含脱镁叶绿素的纯叶绿素a提取液在酸化前后光密度比值，R=E_b/E_a，目前采用R值为1.7；

K——叶绿素a在665纳米处的比吸光系数的倒数乘以1000.根据目前资料，比吸光系数在90%丙酮中一般取89，在90%乙醇中取87，在100%甲醇中取77，故K值相应为11.24，11.49和12.99；

V_e——提取液的总体积（10毫升）；

V——抽滤的水样体积（升）；

I——比色皿的光径（厘米）。

因上式中R和K值为已知，如用90%丙酮作提取剂，比色皿光径为1厘米，则上述计算公式可简化为：

分光光度法的测定极限为1微克/升，如果水中叶绿素含量极低（如贫营养型湖泊水库和海洋），则要用荧光法测定，它的灵敏度至少比分光光度法要提高10倍。

浮游植物的生物量还可通过测定其他化学成分，如碳、氮、磷、蛋白质、，酶、ATP等来求得，但这些方法都还存在不少问题，较难普遍采用。

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