一、概述
植物体中的酶影响着植物细胞的生长、分裂、分化，并能决定植物的生根、发芽、开花、结实、休眠、脱落等。植物酶对植物的生长发育有重要的调节控制作用。卡文思检测提供了科学的实验技术及专业的实验操作，主要针对氧化还原酶、蛋白酶、裂解酶、转移酶、异构酶等检测。对于多种酶共同的检测效率更高。
二、检测指标
卡文思采用自研试剂盒检测植物、血清及组织样本酶活指标，可以售卖成品试剂盒或提供代测服务。如有需求，请联系400-066-8286.
| 序号 | 指标 | 序号 | 指标 | 序号 | 指标 |
|---|---|---|---|---|---|
| 1 | 过氧化氢酶（CAT） | 2 | 过氧化物酶 (POD) | 3 | 超氧化物歧化酶(SOD) |
| 4 | 抗坏血酸过氧化物酶（APX） | 5 | 过氧化氢（H2O2） | 6 | 丙二醛（MDA） |
| 7 | 抗坏血酸氧化酶（ASO/AAO） | 8 | 多酚氧化酶（PPO） | 9 | 谷胱甘肽还原酶（GR） |
| 10 | 苯丙氨酸解氨酶（PAL） | 11 | 磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶（PEPC） | 12 | 蔗糖合成酶（SS） |
| 13 | 谷氨酸合成酶(GOGAT) | 14 | 谷氨酰胺合成酶（GS） | 15 | 蔗糖酶（SC） |
| 16 | 谷胱甘肽S-转移酶（GST） | 17 | 谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px） | 18 | 总抗氧化能力（T-AOC） |
| 19 | 超氧阴离子（OFR） | 20 | 单脱氢抗坏血酸还原酶（MDHAR) | 21 | 脱氢抗坏血酸还原酶（DHAR） |
| 22 | 脱氢抗坏血酸（DHA） | 23 | 氧化型谷胱甘肽（GSSG） | 24 | 还原型谷胱甘肽（GSH） |
| 25 | 蔗糖磷酸合成酶（SPS） | 26 | 谷氨酸脱氢酶（GDH） | 27 | α-淀粉酶/β-淀粉酶/总淀粉酶 |
| 28 | 腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶 | 29 | 结合态淀粉合成酶(GBSS） | 30 | 可溶性淀粉合成酶(SSS） |
| 31 | 硝酸还原酶（NR） | 32 | UFGT糖基转移酶 | 33 | β-1，3-葡聚糖酶 |
| 34 | 亚硝酸还原酶（NIR） | 35 | α-葡萄糖苷酶（α-GC） | 36 | β-葡萄糖苷酶（β-GC） |
| 37 | 中脂氧合酶（LOX） | 38 | 蛋白浓度（用于酶活测定） | 39 | 二磷酸核酮糖羧化酶/加氧酶(Rubisco) |
| 40 | 磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(UDPG) | 41 | 胰蛋白酶抑制剂 | 42 | 淀粉分支酶（SBE） |
| 43 | 淀粉脱分支酶（DBE） | 44 | 谷丙转氨酶（GPT/ALT） | 45 | 谷草转氨酶（GOT/AST） |
| 46 | 肉桂酸-4-羟基化酶（C4H） | 47 | 香豆酸辅酶A连接酶（4CL） | 48 | 胰脂肪酶 |
| 49 | 抗氧化能力DPPH | 50 | 抗氧化能力FRAP | 51 | 抗氧化能力CUPRAC |
| 52 | 抗氧化能力ABTS | 53 | 植酸酶 | 54 | 酪氨酸解氨酶TAL |
| 55 | 溶菌酶 | 56 | 葡萄糖氧化酶 | 57 | 纤维素酶 |
| 58 | 脂肪酶抑制活性 | 59 | α-淀粉酶抑制活性 | 60 | α-葡萄糖苷酶抑制活性 |
| 61 | 脱氢酶 | 62 | PME（果胶甲酯酶） | 63 | PG（多聚半乳糖醛酸酶） |
| 64 | β-半乳糖苷酶 | 65 | PL（果胶裂解酶） | 66 | 漆酶 |
| 67 | 中性转化酶 | 68 | 酸性转化酶 | 69 | 酸性磷酸酶 |
| 70 | 木质素过氧化物酶 | 71 | 锰过氧化物酶 | 72 | 肉桂醇脱氢酶（CAD） |
| 73 | 半胱氨酸 | 74 | 脲酶 | 75 | 碱性磷酸酶 |
| 76 | α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶（α-L-Af） |
三、推荐检测项目：SOD、POD、CAT、H2O2、MDA、APX
1、按研究方向分：
植物研究，反应植物生长和成熟品质（农学、林学、园艺、种植等研究）
作物栽培研究，根据植物生长和品质调节（大田作物，如玉米、水稻等，园艺或经济作物研究）
2、按学科分：
农学院 - 作物高效栽培、遗传育种、种质资源创新
生命科学 - 分子育种、作物品质形成和抗逆机制研究、生物化学与分子生物学、品质代谢调控与遗传改良
林学院 - 森林生态、林木培育
园艺院 - 果树栽培生理、果实品质
微生物 - 微生物群落生态学、抗逆机制研究、微生物酶生物技术
植保所 - 生防微生物与作物互作、病害及农残
四、检测方法介绍——MDA风光光度计法介绍
MDA是膜脂过氧化最重要的产物之一，它的产生还能加剧膜的损伤因此在植物衰老生理和抗性生理研究中MDA含量是一个常用指标，可通过MDA了解膜脂过氧化的程度，以间接测定膜系统受损程度以及植物的抗逆性。在酸性和高温度条件下，MDA可以与硫代巴比妥酸(TBA)反应生成红棕色的产物，其最大吸收波长在532nm。且植物组 织中蔗糖与TBA显色反应产物的最大吸收波长在450nm，但532nm处也有吸收。测定时需去除这部分干扰，从而准确计算出样本中丙二醛的含量。
操作：
依次加入100μL样本和标准品于试管中，在加入300μL试剂一，95℃沸水浴20min，离心取200ul上清液于96孔板，450nm，532nm，600nm处分别读数。
仪器和试剂：
离心机、组织破碎仪、计时器、移液器，96孔板，酶标仪（450nm、532nm、600nm），混匀器、水、沸水锅、离心机
检测范围：
0.1-200nmol/mL
五、案例分享
实验目的：为研究GmADF13对植物胁迫耐受性的生理机制，测定了正常和OE植物脯氨酸（Pro）、丙二醛（MDA）、过氧化氢酶（CAT）、过氧化物酶（POD）、超氧化物歧化酶（SOD）和超氧化物阴离子（O2−）水平。
实验方法：Pro、MDA、CAT、POD、SOD、o2含量的测定委托南京卡文思检测技术有限公司（南京，China）提供相应的技术支持。所有测量均采用3个生物重复进行。
实验结论：这些因素在OE植株中与正常条件下的EV植株中没有差异。然而，OE植株经历了延迟性的叶片枯萎病（图A）。在干旱胁迫下，OE植物中的Pro（图G），CAT（图I），POD（图J）和SOD（图K）水平高于EV植物，MDA(图H)和O2(图L)水平低于EV植物。
干旱胁迫下GmADF13转基因大豆毛状根的表型及生理分析