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植物体中的酶影响着植物细胞的生长、分裂、分化,并能决定植物的生根、发芽、开花、结实、休眠、脱落等。植物酶对植物的生长发育有重要的调节控制作用。卡文思检测提供了科学的实验技术及专业的实验操作,主要针对氧化还原酶、蛋白酶、裂解酶、转移酶、异构酶等检测。对于多种酶共同的检测效率更高。
卡文思采用自研试剂盒检测植物、血清及组织样本酶活指标,可以售卖成品试剂盒或提供代测服务。如有需求,请联系400-066-8286.
序号 | 指标 | 序号 | 指标 | 序号 | 指标 |
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1 | 过氧化氢酶(CAT) | 2 | 过氧化物酶 (POD) | 3 | 超氧化物歧化酶(SOD) |
4 | 抗坏血酸过氧化物酶(APX) | 5 | 过氧化氢(H2O2) | 6 | 丙二醛(MDA) |
7 | 抗坏血酸氧化酶(ASO/AAO) | 8 | 多酚氧化酶(PPO) | 9 | 谷胱甘肽还原酶(GR) |
10 | 苯丙氨酸解氨酶(PAL) | 11 | 磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC) | 12 | 蔗糖合成酶(SS) |
13 | 谷氨酸合成酶(GOGAT) | 14 | 谷氨酰胺合成酶(GS) | 15 | 蔗糖酶(SC) |
16 | 谷胱甘肽S-转移酶(GST) | 17 | 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px) | 18 | 总抗氧化能力(T-AOC) |
19 | 超氧阴离子(OFR) | 20 | 单脱氢抗坏血酸还原酶(MDHAR) | 21 | 脱氢抗坏血酸还原酶(DHAR) |
22 | 脱氢抗坏血酸(DHA) | 23 | 氧化型谷胱甘肽(GSSG) | 24 | 还原型谷胱甘肽(GSH) |
25 | 蔗糖磷酸合成酶(SPS) | 26 | 谷氨酸脱氢酶(GDH) | 27 | α-淀粉酶/β-淀粉酶/总淀粉酶 |
28 | 腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶 | 29 | 结合态淀粉合成酶(GBSS) | 30 | 可溶性淀粉合成酶(SSS) |
31 | 硝酸还原酶(NR) | 32 | UFGT糖基转移酶 | 33 | β-1,3-葡聚糖酶 |
34 | 亚硝酸还原酶(NIR) | 35 | α-葡萄糖苷酶(α-GC) | 36 | β-葡萄糖苷酶(β-GC) |
37 | 中脂氧合酶(LOX) | 38 | 蛋白浓度(用于酶活测定) | 39 | 二磷酸核酮糖羧化酶/加氧酶(Rubisco) |
40 | 磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(UDPG) | 41 | 胰蛋白酶抑制剂 | 42 | 淀粉分支酶(SBE) |
43 | 淀粉脱分支酶(DBE) | 44 | 谷丙转氨酶(GPT/ALT) | 45 | 谷草转氨酶(GOT/AST) |
46 | 肉桂酸-4-羟基化酶(C4H) | 47 | 香豆酸辅酶A连接酶(4CL) | 48 | 胰脂肪酶 |
49 | 抗氧化能力DPPH | 50 | 抗氧化能力FRAP | 51 | 抗氧化能力CUPRAC |
52 | 抗氧化能力ABTS | 53 | 植酸酶 | 54 | 酪氨酸解氨酶TAL |
55 | 溶菌酶 | 56 | 葡萄糖氧化酶 | 57 | 纤维素酶 |
58 | 脂肪酶抑制活性 | 59 | α-淀粉酶抑制活性 | 60 | α-葡萄糖苷酶抑制活性 |
61 | 脱氢酶 | 62 | PME(果胶甲酯酶) | 63 | PG(多聚半乳糖醛酸酶) |
64 | β-半乳糖苷酶 | 65 | PL(果胶裂解酶) | 66 | 漆酶 |
67 | 中性转化酶 | 68 | 酸性转化酶 | 69 | 酸性磷酸酶 |
70 | 木质素过氧化物酶 | 71 | 锰过氧化物酶 | 72 | 肉桂醇脱氢酶(CAD) |
73 | 半胱氨酸 | 74 | 脲酶 | 75 | 碱性磷酸酶 |
76 | α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶(α-L-Af) | 77 | 碱性蛋白酶 | 78 | 中性蛋白酶 |
79 | 酸性蛋白酶 |
1、按研究方向分:
植物研究,反应植物生长和成熟品质(农学、林学、园艺、种植等研究)
作物栽培研究,根据植物生长和品质调节(大田作物,如玉米、水稻等,园艺或经济作物研究)
2、按学科分:
农学院 - 作物高效栽培、遗传育种、种质资源创新
生命科学 - 分子育种、作物品质形成和抗逆机制研究、生物化学与分子生物学、品质代谢调控与遗传改良
林学院 - 森林生态、林木培育
园艺院 - 果树栽培生理、果实品质
微生物 - 微生物群落生态学、抗逆机制研究、微生物酶生物技术
植保所 - 生防微生物与作物互作、病害及农残
MDA是膜脂过氧化最重要的产物之一,它的产生还能加剧膜的损伤因此在植物衰老生理和抗性生理研究中MDA含量是一个常用指标,可通过MDA了解膜脂过氧化的程度,以间接测定膜系统受损程度以及植物的抗逆性。在酸性和高温度条件下,MDA可以与硫代巴比妥酸(TBA)反应生成红棕色的产物,其最大吸收波长在532nm。且植物组 织中蔗糖与TBA显色反应产物的最大吸收波长在450nm,但532nm处也有吸收。测定时需去除这部分干扰,从而准确计算出样本中丙二醛的含量。
操作:
依次加入100μL样本和标准品于试管中,在加入300μL试剂一,95℃沸水浴20min,离心取200ul上清液于96孔板,450nm,532nm,600nm处分别读数。
仪器和试剂:
离心机、组织破碎仪、计时器、移液器,96孔板,酶标仪(450nm、532nm、600nm),混匀器、水、沸水锅、离心机
检测范围:
0.1-200nmol/mL
实验目的:为研究GmADF13对植物胁迫耐受性的生理机制,测定了正常和OE植物脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)和超氧化物阴离子(O2−)水平。
实验方法:Pro、MDA、CAT、POD、SOD、o2含量的测定委托南京卡文思检测技术有限公司(南京,China)提供相应的技术支持。所有测量均采用3个生物重复进行。
实验结论:这些因素在OE植株中与正常条件下的EV植株中没有差异。然而,OE植株经历了延迟性的叶片枯萎病(图A)。在干旱胁迫下,OE植物中的Pro(图G),CAT(图I),POD(图J)和SOD(图K)水平高于EV植物,MDA(图H)和O2(图L)水平低于EV植物。
干旱胁迫下GmADF13转基因大豆毛状根的表型及生理分析